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(三)如何留好尿液标本
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尿液虽然是人体的排泄物,但作为标本,并想得到准确的检验结果,仍首先决定于尿液标本的正确采集方法。一般而言,尿液标本采集简便而安全,应用价值相对比较高。尿液检验主要用于:①泌尿系统的疾病诊断和疗效观察:如炎症、结石、肿瘤、肾移植后。②协助诊断糖尿病、急性胰腺炎、急性黄疸型病毒性肝炎等其他系统的疾病。③安全用药的监测:对可损害肾脏的药物,如使用了庆大霉素、卡那霉素、多粘菌素B、磺胺类等的病人尿液进行检查。
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1.容器 要干净,宜使用一次性专用的广口、有盖塑料容器,容量宜大于50ml,若留取24h尿标本,容量宜大于2000ml;如使用其他容器(如药瓶、饮料瓶等),需特别注意洗净、凉干后才能使用,否则各种污染物质可干扰测定结果;不能使用一次性尿布留取标本。
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2.避免污染 不可混有粪便。女性病人避免混入阴道分泌物或月经血。男性病人避免混入前列腺液和精液。
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3.时间 室温下,尿内成分在离体后即开始分解,故尿标本应及时送检。从标本收集到检验完成所间隔的时间不应超过2h,以免细菌污染和各种成分改变。
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4.标本种类 ①晨尿:一般留取早晨第一次尿,因为,此种尿液至少在膀胱中留存了8h,各种成分浓缩,尤其有利于尿液有形成分、包括可能存在于尿中的细菌检出。②随机(随意)尿:即病人任何时间排尿作检验用的标本,此类标本最适合门诊、急诊病人。但易受多种因素影响,尿中病理成分浓度较低。③餐后2h尿:通常于午餐后2h采集的尿标本,主要用于尿中尿胆原等的检验。④12h尿:要求前一天晚上8时,先排尽当时的余尿后,再开始留尿,收集直至第二天早晨8时之内的全部尿液,主要用于尿中有形成分计数。⑤24h尿:方法同12h尿,主要用于化学物质(蛋白质、糖等)检验等。⑥尿培养标本:用清洁、无菌容器收集中段尿(指不收集最先排出的和最后排出的尿,只留取中间排出的一部分尿液)。主要用于细菌培养和药物敏感性试验。
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5.尿液标本保存 尿标本如不能及时检验,则需作适当保存,否则各种物质易遭破坏。方法有:①冷藏:以4℃较好,注意避免结冰,否则尿中的盐类结晶容易析出,可发生沉淀干扰检验。冷藏法简便,病人易于操作。②化学法防腐:常用甲醛(俗称福尔马林)、甲苯、浓盐酸、冰乙酸等,均有各自的适用范围,一般由医务人员操作。
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尿标本成分如发生分解,检验结果就不能反映病人的真实情况,然而此种变化早期难以发觉,尤其是病人自己。但尿标本明显腐败时,病人自己就可从尿外观直接发现异常。例如:①尿颜色加深:是由于尿中代谢物氧化还原所致。②尿浑浊度增加:表示尿中细菌繁殖或(和)结晶沉淀。③尿臭味加重:提示尿中细菌繁殖,分解尿素产生氨味所致。
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(四)如何留好粪便标本
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粪便检验也是临床上最常用的检验之一,标本易获得,病人一般无痛苦,但仍要注意正确的收集方法。
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1.标本来源 粪便标本宜采用自然排便法,如无法自然排便,用其他方法获取的标本则对检验结果可造成影响。如用肛门指检、开塞露通便或灌肠得到的粪便。
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2.标本量 ①一般检验,至少留取大拇指样大小的粪便量或半匙量稀液便。②作血吸虫毛蚴孵化试验,应留取全部粪便。③用化学法作粪便隐血试验,应在试验前3天禁食肉类、动物血、铁剂和维生素C等。
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3.容器 必须用干净的容器,最好用内层涂蜡的纸盒;如作细菌学检验,用灭菌封口的容器。不能使用一次性尿布留取标本。
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4.部位 关键是采集病理性粪便成分,即取含有脓、血、黏液处的粪便,但不能只取脓液、黏液或血液。②若无明显脓血黏液粪便,则应在粪便的多个部位,各取一点,再混合,以提高检出率。
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5.无污染 粪便标本不应混入其他物质,混入尿液可使原虫死亡,如混入污水等杂物可混淆检验结果。
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6.送检时间和温度 ①粪便标本采集后应尽早送检,一般不超过1小时。②检查阿米巴滋养体的标本,应在25℃保温,立即镜检。
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(五)如何配合脑脊液标本采集
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脑脊液采集常由医生进行腰椎穿刺术(腰穿)获得。脑脊液检验适用于有剧烈头痛、昏迷、抽搐、瘫痪等症状病人,或怀疑有颅内出血、脑膜白血病或有脑膜刺激症的病人。
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通常采集3管脑脊液,每管3~5ml,儿童采集量不宜超过8ml,颅内高压者通常不宜采集。采集后1h之内室温下送检,越快越好。穿刺后,病人应俯伏或仰卧4~6h,但不用枕头,以免引起术后低颅压头痛。
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(六)如何配合浆膜腔积液标本采集
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浆膜腔主要包括人体的胸腔、腹腔、心包腔等。正常时仅有少量液体,其作用是减少脏器活动时产生的摩擦。疾病时,可产生过多的病理性的液体,分别称为胸腔积液(胸水)、腹水、心包腔积液。标本由临床医生用无菌穿刺术获得,主要用于判断积液的性质,如区分炎症性或非炎症性、良性或恶性、病原体及其种类,或用于抽液减压、用药治疗等。
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浆膜腔积液标本留取量多少不一,通常用于细胞计数和分类的标本宜用EDTA抗凝,采集量为5~8ml;用于化学检验的标本宜用肝素抗凝或不抗凝,采集量为8~10ml;细菌培养和革兰染色的标本采集量为8~10ml;结核杆菌培养的标本采集量为15~50ml。采集后应立即送检。如作生化检查,应同时采血作相应项目测定,以资对照。采集关节滑膜液前,病人应禁食6h,使血液与滑膜液之间葡萄糖成分得以平衡。
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病人应配合医生作好标本采集,消除顾虑,在穿刺过程中避免咳嗽或深呼吸。
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