1701462830
1701462831
1701462832
图3-11 家兔耳缘静脉注射方法
1701462833
1701462834
6．灌胃法
1701462835
1701462836
将注射针头（10～12号针头用于小鼠，12～14针头用于大鼠）的尖端斜面磨齐用焊锡在尖端焊一圆头，在中部弯一约30°角制成灌胃管。操作时将其安在注射器上，吸取药液，将灌胃管自动物口腔插入食道（插入深度：小鼠3cm，大鼠5cm，家兔15cm），即可注入药液。如给大、小鼠灌胃可用左手拇指和食指抓住鼠两耳和头部皮肤，其他手指抓住背部皮肤，将鼠腹部朝上固定在手掌中，头部向上有一个倾斜度。实验者右手持注射器，使灌胃管沿着鼠嘴侧角通过食管进入胃内，即可灌注。如很畅通，则说明针头的确进入胃内；如果不畅通，动物挣扎或发生呕吐，表示针头没有进入胃内，应将针头拔出重新操作（图3-12）。
1701462837
1701462838
1701462839
1701462840
1701462841
图3-12 大鼠灌胃方法
1701462842
1701462843
现代生理心理学实验教程 [:1701461751]
1701462844
1701462845
1701462846
五、实验动物的采血方法
1701462847
1701462848
（一）大小鼠的采血法
1701462849
1701462850
1．鼠尾取血
1701462851
1701462852
将大鼠或小鼠置于固定盒内（或由助手抓紧），露出尾巴，用手揉擦或用温水（45℃）加温鼠尾，也可用二甲苯或酒精涂擦鼠尾，使鼠尾充分充血后，用剪刀剪去尾尖，尾静脉血即可流出，用手轻轻的从尾根部向尾尖部推挤，即可收集到少量血液（图3-13）。
1701462853
1701462854
实验时如果需要间隔一定时间，反复采集少量血液，则每次采集时，可将鼠尾剪去一小段，取血后，用棉球压住止血，并用液体火棉胶涂于伤口处，以保护伤口。
1701462855
1701462856
1701462857
1701462858
1701462859
图3-13 鼠尾静脉取血
1701462860
1701462861
2．眼眶动脉和静脉取血
1701462862
1701462863
实验者用左手抓住鼠，尽量绷紧头部皮肤，将动物倒持压迫眼球，使其充血，右手持一弯钩小镊子在鼠的眼球根部将眼球摘去，血很快流出即可接取。这种采血方法在采血过程中动物没有死，心脏仍在跳动，因此采集到的血比其他方法要多。另外，也可从眼眶后静脉丛取血，用特制的硬质玻璃管（内径1.0～1.5mm）先吸取抗凝剂（1%肝素）湿润其内壁，再从内侧眼角插入约4～6mm，由于血压的关系，血液就流入玻璃管。采集到所需要的血液量后，除去加于颈部的压力即可止血。此种方法可以采集较多量的血液，动物休息数分钟后，可继续在同一穿刺孔重复采集血液（图3-14）。
1701462864
1701462865
1701462866
1701462867
1701462868
图3-14 大鼠眼眶取血
1701462869
1701462870
3．心脏取血法
1701462871
1701462872
将鼠仰卧固定在鼠板上，若是大鼠，固定前最好用乙醚麻醉。剪去心区部位的被毛，用碘酒、酒精消毒皮肤。在左胸3至4肋间，用左手食指摸到心跳最明显处，右手持注射器垂直进针，当感到有脱空感时，说明针头已插入心脏（图3-15）。由于心搏的力量和血压的关系血液自然进入注射器。如果是小鼠的话，也可一人徒手采血。即左手拇指和食指握住颈部，小指压住鼠尾使之仰于左手内，右手持注射器在左心区经消毒处理的部位，心博最强处刺入心脏，即可采集血液。
1701462873
1701462874
1701462875
1701462876
1701462877
图3-15 鼠心脏取血方法
1701462878
1701462879
4．急性断头取血