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（1）用水平仪将定位仪主框调节至水平位置。
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（2）将耳杆固定柱固定在约12cm处；将上颌固定器固定在主框中点。
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（3）将门齿固定槽调至低于耳杆中点2.4mm。
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（4）调节电极移动架，使三个移动滑尺相互垂直。
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调节完毕后，参见第一章相关内容，学习使用方法及注意事项。
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4．动物的麻醉及术前准备
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大鼠称重后，按3.5mL/kg体重腹腔注射10%的水合氯醛溶液麻醉动物。动物开始麻醉后，将其固定在定位仪上，并将头顶备皮（面积约2cm×3cm）。用75%酒精棉球擦拭手术器械。手术须等动物完全麻醉后（约过15分钟）再开始。
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5．手术过程
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（1）用75%酒精棉球对动物头顶备皮处消毒，然后用手术刀作一个1.5～2.0cm的正中切口，并切开皮下筋膜。
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（2）用镊子夹一干棉球将切口分开，暴露前囟，并用铅笔做标记。
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（3）用移动滑尺标出头骨钻孔处位置，然后用丝锥在头骨上钻孔，注意勿过深。
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（4）将电极固定于电极移动架上，依照坐标将电极尖端旋至LH部位。
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（5）将牙托粉和自凝牙托水混合成略稀的糊状，与螺丝和电极一并固定于动物头骨上。待牙托粉成形凝固后，取下电极夹。将动物送回休养，1周后，继续进行实验。
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6．电刺激LH
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在进行电刺激前应使动物吃饱并摄取足够的水。
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（1）刺激参数：电流50～100μA，时间2～5s。
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（2）将恒流输出仪调整参数后与电极座连接好，刺激三次，每次间隔至少5min，观察并记录刺激后动物的摄食、饮水情况。
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7．电解损毁LH
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（1）将动物麻醉，进行双侧阳极损毁。恒流直流电源的阳极接在埋藏电极的插座上，阴极接在动物的背部皮肤上，以下列参数电解LH，脑组织的损伤范围直径约为1.5mm左右。刺激参数：电流1.0mA，时间5～10s（对照组动物不做此步骤）。
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（2）损毁完毕后，在切口处撒少许消炎粉，然后将伤口缝合，每针间距约为3～5mm。
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如果只做损毁不做电刺激步骤可直接使用单极电极。
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8．水及食物的供给和行为观察
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手术后要保证动物可自由获取水及食物。
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由于实验周期的限制，本实验只能显示下丘脑LH区损毁后阶段1至阶段2的摄食及体重变化。鉴于在此期间动物一般不饮不食，为维持其生命，需每日腹腔注射5mL生理盐水。对照组动物应给予同样处理，以便于比较。
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9．摄食量及体重变化的计算
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