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（2）不饮，但可食少量（美味）食物，此阶段持续5～30天；
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（3）能自己摄食，但不主动饮水；
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（4）少数损毁区域不大的动物可以恢复到此阶段，即动物能够相对正常地吃干食和饮水，将体重保持在一个较低的恒定水平。
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随后的很多研究还发现其他一些脑区域也与摄食调节有关，如下丘脑室旁核、穹隆柱周围区与VMH一起参与饱食控制，而黑质及其黑质纹体束调控与饥饿相关的多种享用行为（吃、喝、侵犯、咬、筑巢、贮藏等）。注意，LH并非唯一的能够产生摄食行为的中枢，其管辖的也并非只是摄食行为。
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【实验对象】
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SD品系雄性大鼠2只，体重240g左右（动物规格与本实验所用的脑立体定位图谱一致），1只实验，1只对照组。实验前，动物应在自由取食和取水的环境下分笼饲养1周以上。
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【实验用品】
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立体定位仪、电子秤、手术器械、钟表丝锥、单极电极、不锈钢绝缘丝（直径0.1～0.3mm）、恒流输出仪、灌流设备、切片机。
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消炎粉、10%水合氯醛溶液、牙托粉、自凝牙托水、75%酒精棉球。
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【实验内容】
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1．双极电极的制作
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截取不锈钢绝缘丝约15cm，中间对折，两头夹住，从两头向相反方向使劲拧成绳状，然后在距离一端20mm处松开约10mm，将此处的绝缘漆刮掉，分别焊以电极座。具体制作过程参见实验2。
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注意：电极尖端必须保持绝缘，在焊接时务必细心操作。
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2．大鼠脑的立体定位图谱及LH区的坐标
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在本实验所用的图谱版本中，LH的坐标为：AP—2.2mm,R(L)—2.0mm,H—7.8mm。
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3．立体定位仪的调节及使用
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（1）用水平仪将定位仪主框调节至水平位置。
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（2）将耳杆固定柱固定在约12cm处；将上颌固定器固定在主框中点。
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（3）将门齿固定槽调至低于耳杆中点2.4mm。
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（4）调节电极移动架，使三个移动滑尺相互垂直。
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调节完毕后，参见第一章相关内容，学习使用方法及注意事项。
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4．动物的麻醉及术前准备
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大鼠称重后，按3.5mL/kg体重腹腔注射10%的水合氯醛溶液麻醉动物。动物开始麻醉后，将其固定在定位仪上，并将头顶备皮（面积约2cm×3cm）。用75%酒精棉球擦拭手术器械。手术须等动物完全麻醉后（约过15分钟）再开始。
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5．手术过程
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（1）用75%酒精棉球对动物头顶备皮处消毒，然后用手术刀作一个1.5～2.0cm的正中切口，并切开皮下筋膜。
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